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    豬瘟病毒疫苗株(HCLV)熒光PCR檢測試劑盒
    產品簡介

    豬瘟病毒疫苗株(HCLV)熒光PCR檢測試劑盒適用于檢測的全血等標本中豬瘟病毒疫苗株 RNA,適用于豬瘟病毒疫苗株感染的輔助診斷。其檢測結果僅供參考。
    本試劑盒用一對豬瘟病毒疫苗株特異性引物,結合一條特異性熒光探針,用一步法熒光 RT-PCR 技術對豬瘟病毒疫苗株 RNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

    產品型號:
    更新時間:2023-03-08
    廠商性質:生產廠家
    訪問量:2091
    詳細介紹在線留言

    豬瘟病毒疫苗株(HCLV)熒光PCR檢測試劑盒說明書

    【產品名稱】

    商品名稱:豬瘟病毒疫苗株(HCLV)核酸檢測試劑盒(RT-PCR 熒光探針法)

    Name :Diagnostic Kit for Hog Cholera Lapinized Virus RNA (RT-PCR Fluorescence Probing)

    【包裝規格】48 份/盒

    【預期用途】

    本試劑盒適用于檢測的全血等標本中豬瘟病毒疫苗株 RNA,適用于豬瘟病毒疫

    苗株感染的輔助診斷。其檢測結果僅供參考。

    【檢驗原理】

    本試劑盒用一對豬瘟病毒疫苗株特異性引物,結合一條特異性熒光探針,用一

    步法熒光 RT-PCR 技術對豬瘟病毒疫苗株 RNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對

    可疑感染者的病原學診斷。

    【試劑組成】

    名 稱 規 格

    酶液 50μl×1 管

    HCLV 反應液 1.0ml×1 管

    HCLV 陽性質控品 50μl ×1 管

    陰性質控品 250μl ×1 管

    說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

    【儲存條件及有效期】

    -20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融少于 5 次,

    有效期 12 個月。

    【適用儀器】

    ABI 7300、7500、ABI stepone / stepone plus 、安捷倫 MX3000P/3005P、MJ

    Opticon2 等其他熒光定量 PCR 檢測儀。

    【標本采集】

    待檢活豬,用注射器取血 5mL。

    【保存和運輸】

    上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標

    本運送應采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。

    【使用方法】

    1. 樣品處理(樣本處理區)

    1.1樣本前處理

    全血樣品待血凝后取血清 100uL,置 1.5mL 離心管中。

    1.2RNA 提取

    推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產的 RNA 提取試劑盒(離心柱提取

    法),請按照試劑盒說明書進行操作。

    2. 試劑配制(試劑準備區)

    根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性

    對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

    試劑 HCLV 反應液 酶液

    用量 20μl 1μl

    3. 加樣(樣本處理區)

    將步驟 1 提取的 RNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μl,分別加入相應的反

    應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

    4. PCR 擴增(核酸擴增區)

    4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

    4.2設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25ul;熒光通道選擇:

    檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,請勿

    選擇 ROX 參比熒光。

    4.3推薦循環參數設置:

    步驟 循環數 溫度 時間 收集熒光信號

    1 1cycle 42℃ 20min 否

    2 1 cycle 95℃ 10min 否

    3 40 cycle

    94℃ 15sec 否

    55℃ 30sec 是

    5. 結果分析判定

    5.1結果分析條件設定

    設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲

    線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15

    范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value

    值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

    5.2結果判斷

    陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數增長曲線;

    可疑:檢測通道 35.0<Ct 值≤37,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35.0<Ct

    值≤37,且曲線有明顯的增長曲線,判定為陽性,否則為陰性;

    陰性:樣本檢測結果 Ct 值>37 或無 Ct 值。

    6. 檢測方法的局限性

    Ø 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

    Ø 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

    Ø 陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

    Ø 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

    Ø 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

    Ø 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或

    定量檢測不準確的結果;

    Ø 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

    7. 質控標準

    陰性質控品:無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示;

    陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32;

    以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

    8. 產品性能指標

    陰陽性參考品符合率:5 份陽性參考品符合率為 100%;10 份陰性參考品符合率

    為 100%。

    低檢測限:5.0×102copies/ml。

    精密度:批內、批間精密度檢測 Ct 值的變異系數(CV)均小于等于 3%。

    【注意事項】

    Ø 所有操作嚴格按照說明書進行;

    Ø 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心;

    Ø 反應液應避光保存;

    Ø 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

    Ø 使用一次性吸頭、一次性手套和各區工作服;

    Ø 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

    Ø 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

    Ø 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全

    通則》進行處理。

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